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            自考醫學專業論文

            鼠同種異體腎上腺細胞腎被膜下移植

            時間:2022-10-05 19:21:36 我要投稿
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            鼠同種異體腎上腺細胞腎被膜下移植

              鼠同種異體腎上腺細胞腎被膜下移植

              【摘要】 目的:觀察大鼠同種異體腎上腺細胞腎被膜下移植治療腎上腺皮質功能不全的可行性,并提供一種有效的移植途徑。

              方法:成年雄性Wistar大鼠40只,分為對照組(雙側腎上腺切除術),實驗組(雙側腎上腺切除+腎被膜下細胞移植術),假手術組(僅暴露腎臟后關閉切口),觀察大鼠體內皮質酮、醛固酮激素質量濃度的動態變化及局部新生組織的血管生長和淋巴、巨噬細胞的浸潤情況。

              結果:移植的腎上腺細胞可存活并能部分替代大鼠分泌皮質酮、醛固酮的功能。

              術后6周局部可見血管長入,無明顯炎性細胞浸潤。

              結論:植入腎被膜下的腎上腺細胞能存活并有分泌功能,且腎被膜下移植為腎上腺細胞提供良好的移植床。

              【關鍵詞】 大鼠;腎上腺細胞;腎被膜下;異體移植

              [Abstract]Objective: To observe the outcome of allotransplantation of adrenocortical cells in subrenal capsule in rats to treat insufficiency of adrenocortical function, and to apply an effective way of transplants.

              Method: Cultured adrenocortical cells in vitro had transplanted into subrenal capsule with bilaterally adrenalectomized allorats, the plasma corticosterone and aldosterone level, graft survival and pathology were compared respectively.

              Results: The transplanted adrenocortical cells could survive and partially represent functions of adrenal glomerulosa zona and fasciculate zona.

              The plasma corticosterone and aldosterone levels were 80%、30% of sham_operated group eight weeks after operation respectively, the pale yellow tissue was visible in subrenal capsule and had been invaded by prominent blood vessels, the tissue had not been invaded by inflammatory cells.

              Conclusion: Adrenocortical cells that have been transplanted into subrenal capsule can survive and secrete corticosterone and aldosterone, the subrenal capsule is a good position for transplantation of adrenocortical cell.

              [Key Words]rat,adrenocortical cell,subrenal capsule,allotransplantation

              腎上腺皮質功能減退者可用激素替代治療,但需終身服藥,劑量難以掌控,且單純用糖皮質激素不能彌補腎上腺所有激素的短缺,特別是沒有應急能力,因此,目前認為腎上腺移植仍然是治療慢性腎上腺皮質功能減退最理想的方法[1]。

              但由于器官來源困難及移植后的免疫排斥,其臨床效果,特別是遠期療效不甚滿意。

              而腎上腺細胞移植有細胞來源豐富、可長期保存和細胞的弱免疫原性的特點,可成為治療腎上腺皮質功能不全的理想方法。

              本實驗將體外培養的腎上腺細胞進行腎被膜下移植,為臨床應用腎上腺細胞移植提供實驗依據。

              1 材料與方法

              1.1 實驗動物和耗材

              成年雄性Wistar大鼠(武漢大學醫學院實驗動物中心提供)40只,體質量200~250g,2周齡Wistar大鼠(提供處同上)60只。

              膠原酶Ⅰ型、DNA酶、胰蛋白酶、DMEM/F_12培養基、3_(4,5_二甲基_2_噻唑)_2,5_二苯基溴化四唑(四甲基偶氮唑藍,MTT)、胎牛血清(Sigma公司,美國),皮質酮酶免法試劑盒(DSL公司,美國),醛固酮放免試劑盒(中國原子能研究院同位素研究所,中國)。

              1.2 腎上腺細胞體外培養與移植方法

              無菌切取2周齡大鼠的雙側腎上腺,D_Hank?s液洗滌數次后去除附于腺體表面的血跡,在無菌罩內小心剔除腎上腺周圍脂肪,剪成1mm×1mm×1mm碎塊,置于質量濃度1g/L Ⅰ型膠原酶、質量濃度5mg/L DNA酶的消化液中37℃水浴振蕩消化20min,待溶液呈粘糊狀時加入適量含小牛血清的培養基終止消化反應,400目鋼絲網過濾,收集濾液200g離心10min,棄上清液,Hank?s液、DMEM/F_12培養基依次各洗滌2次,200g離心10min收集細胞。

              于DMEM/F_12培養基中重懸,反復吹打使細胞均勻分散呈單細胞懸液,細胞計數,調細胞濃度,錐蟲藍染色計數細胞存活率>95%,然后接種至無菌培養瓶37℃、體積分數95%的O2、體積分數5%的CO2培養,原代培養1周后進行細胞移植。

              5_乙基_5_(1_甲基丁基)_2,4,6(1H,3H,5H)_噻啶三酮_鈉鹽(戊巴比妥鈉溶液,質量濃度30mg/kg)腹腔麻醉,對照組(10只)行雙側腎上腺切除術,實驗組(20只)行雙側腎上腺切除術+腎被膜下細胞移植:沿左腎上腺切除術的切口將腎臟外置,于左腎下極鈍性分離腎被膜建立被膜下腔隙,將細胞懸液注入腔隙內,然后用鈦夾關閉腎被膜,每只大鼠移植2×106個腎上腺細胞;假手術組(10只)僅暴露腎臟后關閉切口。

              術后1周肌注激素替代治療以減少術后死亡率,術后飲NS。

              術后第2、4、6、8周8:00~9:00 AM內齜采血測血漿皮質酮、醛固酮質量濃度,采血后取移植體行光鏡檢查。

              1.3 統計學處理

              以±s表示,組間差異用t檢驗。

              2 結果

              2.1 腎上腺細胞分泌功能

              對照組平均存活8.2d,術后2周血漿皮質酮、醛固酮質量濃度顯著下降,術后8周實驗組血漿皮質酮質量濃度約為假手術組的80%,血漿醛固酮水平恢復較慢,術后4周血漿醛固酮質量濃度僅為假手術組的10%,術后8周實驗組血漿醛固酮質量濃度與假手術組比仍有統計學意義(P<0.05,表1、2)。

              表1 血漿皮質酮質量濃度與對照組和假手術組比 1)P<0.05;與假手術組比 2)P<0.05 D表示動物已死亡或檢測低于試劑盒的檢測范圍表2 血漿醛固酮質量濃度(與對照組和假手術組比 1)P<0.05;與假手術組比 2)P<0.05 D表示動物已死亡或檢測低于試劑盒的檢測范圍

              2.2 腎上腺細胞移植病理結果

              2、4周腎被膜下鏡下可見散在細胞團塊附著在腎實質表面,有少許形成組織團塊,腎上腺細胞呈圓形或多角形,胞體大,細胞質透明,內有許多大小規則的顆粒(圖1,封2);6周腎被膜下肉眼可見黃、白色組織,與腎實質緊密相連,鏡下可見血管明顯從腎實質長入,且周圍有連接組織與腎實質和腎被膜連接,未見炎癥細胞浸潤;8周見組織已被明顯血管化,細胞呈條索狀生長,未見炎癥細胞浸潤(圖2,封2)。

              3 討論

              腎上腺是一個實質內分泌器官,其主要功能是分泌糖皮質激素和鹽皮質激素,進行細胞移植時不需要過多考慮其解剖結構的重建,僅僅需要它能分泌肌體所必需的激素即可。

              而且與傳統器官移植相比,細胞移植可以利用細胞體外擴增技術,以少量細胞擴增到細胞移植所需要的量,解決器官移植供體來源不足的難題,在低溫條件下,待移植的細胞可以在體外長期保存,而待移植的器官保存時間則相對較短,并且體外培養可以改變細胞的免疫原性和抗原性,減少免疫排斥反應發生的可能或減輕免疫排斥反應發生的程度[2]。

              本實驗結果顯示,實驗組術后血漿皮質酮、醛固酮質量濃度逐漸上升,血漿皮質酮質量濃度術后2周與對照組比有統計學意義(P<0.05),且血漿皮質酮質量濃度在術后8周能達到假手術組的80%(P<0.05),說明移植細胞進入大鼠體內,移植細胞能存活,且隨移植時間的延長移植細胞的功能狀態逐漸恢復。

              但血漿醛固酮的恢復較慢,術后8周也只有假手術組的30%,這與大多數報道一致。

              可能與移植后球狀帶細胞逐漸喪失醛固酮分泌功能而具有皮質酮分泌功能有關[3]。

              移植細胞的存活在很大程度上取決于移植部位。

              腎被膜下腎上腺細胞移植滿足以下幾個條件:血供豐富,細胞移植成功與否關鍵在于移植后的第1周,血供能否建立是成敗的核心[4];便于移植操作;接近腎上腺正常的解剖部位。

              細胞移植不同于器官移植,異位移植會因為細胞所處的內環境改變而致移植細胞不能長期存活。

              缺點是移植操作較復雜,如果能結合腹膜后腹腔鏡技術,移植操作過程將大大簡化。

              本實驗發現鼠腎被膜下腎上腺細胞移植能夠提供其機體所必需的糖皮質激素和鹽皮質激素,與參考文獻[5]結果一致。

              實驗組血漿皮質酮質量濃度在術后6周明顯超過術后8周的(P<0.05),與病理結果對照可發現術后6周血管從腎實質長入移植體,可能與其分泌的糖皮質激素通過新生血管大量入血有關。

              腎上腺皮質分泌血管內皮生長因子(VEGF),促腎上腺皮質激素不僅調節皮質激素的合成,還在體內促進腎上腺皮質細胞分泌VEGF,可見充分的血供對腎上腺保持功能非常重要。

              實驗表明,VEGF、成纖維生長因子、轉移生長因子_β、血小板衍生生長因子、血管生成素_1均參與了血管形成[6]。

              移植細胞的免疫原性是影響移植效果的重要因素之一,一般認為移植前將細胞在適當條件下培養,可降低移植物的免疫原性,減輕排斥反應,同時腎上腺細胞分泌的糖皮質激素本身可抑制免疫排斥反應,因為大鼠腎被膜下是一個免疫特許部位。

              本實驗組在2、4周細胞團塊及6周、8周帶有血管的組織均沒有見到明顯的炎性細胞浸潤。

              證明腎被膜下也是同種異體腎被膜下腎上腺細胞移植的免疫裸區。

              雖然腎上腺細胞移植在短短的10余年時間取得了長足的進步,但移植細胞的長期存活、功能恢復和免疫排斥難題一直困擾著人們。

              為解決這些問題,本實驗通過大鼠腎上腺細胞腎被膜下移植進行有益嘗試,并找到更好的移植途徑,但移植細胞功能替代及遠期效果還有待進一步研究。

              【參考文獻】

              [1]ELLERKAMP V, MUSHOLT T J, KLEBS SH, et al. A murine model of allogeneic adrenocortical cell transp_lantation: Perspectives for the treatment of Addison's diease in humans[J]. Surgery, 2000, 128(6): 999-1006.

              [2]RUTZKY L, KLOC M, BILINSKI S. Microgravity culture conditions decrease immunogenictiy but maintain excellent morphology of pancreatic islets[J]. Transplant Proc, 2001, 22(1~2): 388.

              [3]李偉, 張孝斌, 張杰, 等. 同種異體腎上腺細胞移植[J]. 武漢大學學報(醫學版), 2003, 2: 157-160.

              [4]TUNSTEAD J R, THOMAS M, HORNSBY P J. Early events in the formation of a tissue structure from dispersed bovine adrenocortical cells following transplantation into scid mice[J]. J Mol Med, 1999, 77: 666-676.

              [5]CIANCIO S J, KING S R, SUWA T, et al. Transplantation of normal and genetically modified adrenocortical cells[J]. Endocr Res, 2000, 26(4): 931-939.

              [6]SOKER S, MACHADO M, ATALA A, et al. Systems for therapeutic angiogenesis in tissue engineering[J]. World J of Urology, 2000, 18(1): 10-18.

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